Enero 2002
REQUISITOS MINIMOS EXIGIDOS
POR LOS SERVICIOS DE SEMEN
CERTIFICADO PARA EL CONTROL
DE ENFERMEDADES EN SEMEN
PRODUCIDO PARA INSEMINACION
ARTIFICIAL
El Manual de los Servicios de Semen Certificado (CSS)
sobre los “requerimientos mínimos para el control de enfermedades en semen
producido para inseminación artificial” provee una guía de los requerimientos mínimos
para el monitoreo de salud y la vigilancia de enfermedades en toros antes de su
entrada, durante el período de aislamiento y a lo largo de su residencia en el
centro de Inseminación Artificial (IA). Esta es una guía para aquellas
enfermedades que presentan el riesgo de ser transmitidas por el semen durante
la inseminación artificial. Mas aún, delimita los procedimientos sanitarios
correctos e incluye los requerimientos para la adición apropiada de
antibióticos tanto al semen como al diluyente para el control de
microorganismos específicos. El objetivo de este reglamento es el de proteger
la salud de los sementales donantes y del hato en donde se va a utilizar el
semen.
CONDICIONES SANITARIAS GENERALES
1.
El equipo para la colección
de semen que esté en contacto con el toro o con sus secreciones o excreciones
deberá ser desinfectado minuciosamente luego de cada uso o se deberá asignar un
equipo individual a cada animal.
2. El colector deberá estar minuciosamente
aseado y deberá utilizar guantes desechables para cada toro para asegurar que
sus manos no sirvan como medio de transmisión de algún material infeccioso o
contagioso de un toro a otro.
3. El laboratorio utilizado para procesar
el semen deberá estar aislado completamente del sitio de estabulación de los
toros y del sitio de colección del semen, y construido para brindar un manejo y
almacenamiento higiénico del semen.
4. Las pruebas sanitarias a ser conducidas se harán de manera
consistente con las normas descritas en los “Procedimientos de Diagnósticos
Uniformes para la Calificación de Toros para la Producción de Semen” descritos
por la Asociación Americana de Veterinarios de Laboratorios de Diagnóstico
(AAVLD) y otros procedimientos reconocidos como equivalentes a los
procedimientos publicados por la AAVLD (http://www.aavld.org/).
5. Debe prestarse atención a
los termos de nitrógeno líquido que regresan de países extranjeros no
declarados libres de Fiebre Aftosa por el USDA, para determinar si han sido
desinfectados en el puerto de entrada. Si han sido debidamente desinfectados,
vendrán acompañados de un tiquete que lo indique. Si no se ha hecho la
desinfección, el Médico Veterinario de USDA/AHPIS del estado deberá ser
notificado y la acción apropiada deberá ser realizada inmediatamente para tener
los termos debidamente desinfectados.
ANIMÁLES DE MONTA
Los animales para monta (señuelos) utilizados durante la
colección de semen deberán ser sometidos al mismo régimen de pruebas periódicas
que los toros para la producción de semen y deben de ser mantenidos
continuamente en condiciones sanitarias iguales a las de los toros que cumplen
con los requisitos de CSS. Los animales de monta no serán intercambiados entre
la población residente y los animales en el área de aislamiento de
pre-ingreso. Las áreas de contacto del
pene erecto o de las secreciones genitales con la piel del señuelo deberán ser
desinfectadas en forma efectiva y minuciosa entre toros sucesivos.
PRE-INGRESO AL AISLAMIENTO
Los toros o montas que van a ingresar a un centro de IA
aprobado por el CSS deberán de estar sanos y libres de enfermedades
infecto-contagiosas y no serán originarios de un rebaño cuarentenado. Subsiguiente
a las pruebas de pre-ingreso descritas más adelante, ni los toros ni las montas
serán usadas en servicio natural y permanecerán aislados de otros bovinos. Se entiende por aislamiento la falta de contacto
directo o a través de alambradas con otros animales.
Las siguientes pruebas diagnósticas y el examen
pre-ingreso deberán ser completados para cada toro o monta antes del comienzo
del período de aislamiento. El período de aislamiento no comenzará hasta que
hayan sido completadas las pruebas de pre-ingreso y sus resultados negativos
sean conocidos.
En el caso de que sea necesario
realizar las pruebas de pre-ingreso en el Centro de IA, los toros y las montas
deberán ser alojados en un edificio diferente y separado del aislamiento y de
los animales residentes. Todo el equipo utilizado para el manejo de los
animales, comida, bebida y artículos para la limpieza serán exclusivos de esta
sección y no tendrán contacto alguno ni con los animales en aislamiento ni con
los animales residentes.
1. Examen Físico: En los treinta
(30) días previos a la entrada al aislamiento, un Médico Veterinario Acreditado
debe realizar un examen físico para determinar que el toro no presenta signos
clínicos de alguna enfermedad infecto-contagiosa.
2. Tuberculosis: La prueba de
tuberculina intradermocaudal deberá ser negativa dentro de los sesenta (60) días
previos a la entrada al aislamiento.
3. Brucelosis: En los treinta (30)
días previos a la entrada al aislamiento debe realizarse la prueba de Brucella
oficial en cada estado y si va a ser trasladado de un estado a otro las pruebas
descritas en el reglamento oficial de cada estado.
4. Leptospirosis bovina:
En los treinta (30) días previos a la entrada al aislamiento deben realizarse
exámenes de sangre contra los serotipos L.
pomona, L. hardjo, L. canicola, L. icterohaemorrhagiae y L. grippotyphosa.
Cualquier animal que muestre un título significativo deberá ser sujeto a un
segundo examen de sangre 2 a 4 semanas después del primer examen. Animales que muestren títulos bajos estables
(negativos a una dilución 1: 400) en los dos exámenes, pueden ser considerados
como satisfactorios para entrar a las unidades de aislamiento del Centro.
5. Diarrea viral bovina
(DVB): En los treinta (30) días previos a la entrada al aislamiento debe
realizarse el examen de sangre o suero con resultado negativo para la DVB. La
prueba será de aislamiento viral en cultivo celular con tinción
inmunofluorescente, o inmunoperoxidasa, o captura de antígeno (ELISA).
AISLAMIENTO
Cada toro deberá mantenerse en aislamiento a lo largo de
todo el período de tiempo necesario para conducir las pruebas que se describen
a continuación antes de ser permitida su entrada al lugar donde se encuentran
los toros residentes y antes de colectar semen.
Como aislamiento se entenderá que el toro se mantendrá en
un lugar efectivamente separado de los toros residentes, de animales de señuelo
y de todo el equipo utilizado para colección de semen, manejo de los animales,
comida, bebida y artículos para la limpieza las cuales no podrán ser usadas por
los animales en aislamiento. Además, el área
para colectar el semen del hato en aislamiento deberá estar separado eficazmente
del área para toros residentes.
1.
Las siguientes pruebas deberán
ser efectuadas a todos los toros y animales de monta.
a. Tuberculosis:
Prueba de tuberculina intradermocaudal, con resultado negativo. Esta prueba
deberá realizarse por lo menos sesenta (60) días luego de la fecha de la prueba
de tuberculina de pre-entrada.
b. Brucelosis:
Una prueba de antígeno ‘buferado’de Brucela, BAPA o tarjeta y una prueba de fijación
de complemento (FC) con resultados negativos. Estas pruebas serológicas deben llevarse
a cabo no antes de treinta (30) días luego de la fecha de la prueba de
pre-entrada para Brucelosis.
En caso de
presentarse un resultado que no fuera negativo, se recomienda que se realice
otra prueba serológica oficial del USDA como la prueba de tarjeta, rivanol,
BAPA, PCFIA. Un resultado negativo en la
segunda prueba o en una o más de las pruebas adicionales, permitirá que el toro
obtenga una calificación negativa para Brucela, pero la palabra final la tiene
el Médico Veterinario Oficial del estado.
c. Leptospirosis bovina: Pruebas serológicas para los serotipos L. pomona, L. hardjo, L. canicola, L. icterohaemorrhagiae y L.
grippotyphosa. Estas pruebas no deberán
ser realizadas antes de 30 días
luego de la fecha de la prueba de Leptospirosis de pre-ingreso. Se prefiere un resultado negativo. Sin embargo, si el resultado es positivo a
una dilución 1:100 o más alto, el animal se debe someter a otra prueba
realizada no menos de 14 días después de la primera. Los animales negativos a una dilución 1:400
en dos pruebas consecutivas se consideran que tienen un título bajo
estabilizado.
d. Campilobacteriosis: Se debe
cultivar y examinar material prepucial para Campylobacter
foetus venerealis, y los resultados deben ser negativos. Como procedimiento alternativo, el material
prepucial puede ser examinado utilizando anticuerpos fluorescentes como técnica
de monitor. A cualquier prueba positiva se le debe hacer un cultivo de material
prepucial y el resultado debe de ser negativo.
Los toros pueden
someterse al siguiente calendario de pruebas.
|
Edad del toro en el momento de entrada al aislamiento |
Número mínimo de
pruebas (intervalos semanales) |
|
Menos de 180 días* |
1 |
|
180 – 364 días |
3 |
|
12 meses o mayor |
6 |
* Siempre y cuando el Veterinario Acreditado pueda
certificar que el ternero no ha cohabitado con hembras después de cumplir un
mes de edad.
e. Tricomoniasis genital bovina:
Una serie de cultivos de material prepucial debe ser negativo. La frecuencia de
muestras deberá ser igual al consignado en el numeral 1.d de AISLAMIENTO.
f. Diarrea viral bovina (DVB): Todos los toros y animales señuelo que entren a centros de Inseminación
Artificial aprobados por el CSS, deberán ser examinados para viremia por infección persistente de DVB con resultados
negativos. Todos los toros serán sometidos a un programa de pruebas para
detectar infección testicular persistente.
Los siguientes métodos y calendarios serán utilizados
para viremia por infección persistente.
I. Prueba de Diagnóstico: El
animal deberá ser sujeto a una prueba de aislamiento en cultivo celular bovino seguido
por la tinción de la células por inmunofluorescencia o inmunoperoxidasa con
resultado negativo.
II. Tipo de Muestra: Para animales
menores de 6 meses el aislamiento debe realizarse sobre las células
mononucleares de una muestra de sangre completa. Para animales de 6 meses o
mayores, el aislamiento puede realizarse en sangre completa o suero.
III. Confirmación de infección
persistente: Si se demuestra la presencia de DVB por inmunofluorescencia o
por inmunoperoxidasa en cultivo celular, el animal deberá ser aislado de otros
animales y probada una segunda vez en no menos de 21 días por inoculación en
cultivo celular bovino con un espécimen adecuado (sangre o suero). Si se
demuestra la presencia del virus una segunda vez, se considera como diagnóstico
de infección persistente y el animal no se considera apto para entrar al hato
residente del Centro.
IV. Confirmación que un animal no tiene
infección persistente: Animales a
los cuales se les ha aislado o demostrado la presencia de DVB, deben permanecer
separados de cualquier otro animal hasta que se pruebe que se encuentra libre
de DVB luego de presentar dos pruebas consecutivas de aislamiento negativas
realizadas con 10 días de intervalo y sobre el espécimen adecuado.
Toros a los que luego
de un aislamiento de DVB hayan sido encontrados negativos de infección
persistente como se explicó, debe tener semen colectado y procesado 30 días
antes y después de la fecha de aislamiento viral, y debe estar sujeto a pruebas
de aislamiento de DVB negativas de cada colección antes de su distribución.
2.
Las siguientes pruebas deben
ser realizadas a todos los toros antes de que su semen sea distribuido. Sin
embargo, si los toros no están en edad de producción de semen al entrar a
aislamiento, las pruebas se pueden realizar luego que se complete el período de
aislamiento:
Diarrea Viral Bovina (DVB):
Uno de los siguientes protocolos ha sido usado para detectar infección
testicular persistente.
i. Realizar pruebas de seroneutralización en
todos los animales durante el período de aislamiento. Los animales que
resultaran positivos serán sometidos a una prueba de aislamiento viral en semen
procesado en cultivo celular con tinción inmunofluorescente (FA) o
inmunoperoxidasa (IP). Semen procesado es semen en su dilución final y congelado.
“O”
ii. Todos los toros fueron sometidos a una prueba de aislamiento
viral en semen procesado en cultivo celular con tinción inmunofluorescente (FA)
o inmunoperoxidasa (IP). Semen procesado
es semen en su dilución final y congelado.
[Los animales que resultaran positivos serán sometidos al aislamiento viral una vez
mas para confirmar si son infectados
persistentes.]
Nota:
Los animales que sean determinados como de infección testicular persistente
para DVB no podrán ser colectados ni serán admisibles en el hato residente.
3.
Todo semen deberá ser
tratado con los antibióticos gentamicina, tilosina, linco-espectina como lo
describe Shin, et al (2) y Lorton, et al (3). Los procedimientos se describen
en el Anexo 1.
HATO RESIDENTE
Una vez que el toro haya completado su período de
aislamiento descrito anteriormente, puede entrar a ser parte del hato residente
donde continuará siendo examinado de acuerdo con la lista siguiente durante
todo el tiempo que su semen sea colectado para inseminación artificial.
1.
Se deberán hacer pruebas
para las siguientes enfermedades a todos los toros cada 6 meses:
a. Tuberculosis: Prueba
intradermocaudal de tuberculina negativa.
b. Brucelosis bovina: Antígeno de Brucela
‘buferado’ BAPA o tarjeta y Fijación de Complemento (FC) con resultados
negativos. (Para mayor información consultar el numeral 1.b Brucelosis
en AISLAMIENTO
c. Leptospirosis bovina: Pruebas
para los serotipos L. pomona, L. hardjo,
L. canicola, L. icterohaemorrhagiae y L. grippotyphosa. Si el resultado no
es negativo, el toro debe tener un título bajo estabilizado. Referirse a AISLAMIENTO 1.c Leptospirosis
bovina.
d. Tricomoniasis venérea
bovina: Un examen microscópico
de material prepucial cultivado con resultado negativo.
e. Campilobacteriosis bovina: Cultivos
de material prepucial con resultado negativo. Como procedimiento alterno, se
puede hacer una prueba de inmunofluorescencia (FA). A toda muestra (FA) positiva
durante el monitoreo se le deberá hacer un cultivo de material prepucial, el
cual deberá ser negativo.
Se le deberá agregar
antibióticos a todo el semen procesado como se indica en el numeral 3. de
AISLAMIENTO.
2. Todos los toros del hato
residente tendrán que mantenerse en aislamiento continuo de otros animales de
pezuña hendida que no hayan cumplido todas las pruebas mencionadas con
resultados negativos durante el tiempo que se colecta semen para inseminación
artificial. Si se permite el contacto de un toro del hato residente con otro
animal que no haya cumplido con todas las pruebas, este deberá ser retirado
inmediatamente del hato y no se le permitirá su entrada nuevamente hasta que
haya cumplido otro período de aislamiento completo y las pruebas anteriores,
excepto en el caso que se describirá a continuación.
3.
No se requiere que a un toro
retirado temporalmente de la producción de semen se le hagan las pruebas para
Tricomoniasis y Campilobacteriosis siempre y cuando se mantenga separado del
hato residente. Sin embargo, deberá mantenerse en un hato que cumpla todas las
condiciones requeridas para un hato residente. El régimen de muestreo de rutina
en un hato residente deberá reanudarse inmediatamente después que vuelva a ser
parte del hato residente.
ANTIBIOTICOS
Y PROCESAMIENTO DE SEMEN
1.
Se debe añadir antibióticos
al semen y al diluyente para brindar un efectivo control microbiológico de:
Micoplasma
Ureoplasma
Histophilus somni
Campylobacter foetus subsp. vererealis
2. Un control microbiológico efectivo es
aquel en el cual el número de organismos potencialmente presentes bajo condiciones
patológicas se reduce a niveles subclínicos (por debajo del umbral de
infectividad).
3. Un protocolo aceptable es el
tratamiento del semen y del diluyente con los antibióticos gentamicina,
tilosina, spectinomicina como lo describe Shin, et al (1) y Lorton, et al
(2,3). Los procedimientos se describen en el Anexo 1.
4. Una alternativa aceptable de protocolo
debe proveer un control microbiológico efectivo (de los organismos en el
numeral 1) basado en evidencia científica, enviada al CSS.
REFERENCIAS
1. Shin,
S.J.; D.H. Lein; V.H. Patten y H.L. Ruhnke, 1988. A New Antibiotic
Combination for Frozen Bovine Semen. 1. Control of Mycoplasmas, Ureoplasmas, Campylobacter foetus subsp. venerealis and Haemophilus somnus. Theriogenology. 29:577.
2. Lorton, S.P.; J.J. Sullivan; B. Bean; M. Kaproth; H.
Kellgren and C. Marshall, 1988. A New Antibiotic Combination for Frozen Bovine
Serum. 2. Evaluation of Seminal Quality. Theriogenology. 29:593.
3. Lorton, S.P.; J.J. Sullivan; B. Bean; M. Kaproth; H. Kellgren
and C. Marshall. 1988. A New Antibiotic Combination for Frozen Bovine Serum 3.
Evaluation of Fertility. Theriogenology. 29:609.
CERTIFIED SEMEN SERVICES
P.O. BOX 1033
Columbia, Missouri
65205-1033
(573) 445-4406 or
445-9541
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ANEXO 1
PROCEDIMIENTOS/CONDICIONES GTLS PARA ANTIBIOTICOS
A. SOLUCIONES
MADRE/ANTIBIÓTICOS
(1) Antibióticos:
a. Sulfato de Gentamicina: polvo,
micronizado, no estéril, U.S.P. (grado veterinario).
100
gramos por botella.
b. Tilosina: tylan soluble, producto de
Elanco.
100
gramos por botella.
c. Linco-espectina: producto de Upjohn.
20 ml por vial, cada
ml contiene 500 mg de lincomicina y 100 mg de spectinomicina.
NOTA: Antibióticos obtenidos de algunas fuentes no han sido probados y pueden
contener agentes nocivos para las células espermáticas. Para fuentes
recomendadas contactar al CSS.
(2) Las
soluciones madres de los antibióticos individuales (gentamicina y tilosina)
pueden ser preparados y almacenados por separado a 5o C por 8 días o
almacenados en congelación en nitrógeno líquido hasta por espacio de 6 meses.
El linco-espectina tal y como lo entrega el distribuidor se debe mantener una
vez abierto a 5o C.
(3) Las
soluciones madres individuales serán combinadas el día de su uso, y no se deben
guardar.
(4) Los
diluyentes se pueden utilizar el día en que se adicionan los antibióticos
combinados.
B.
TRATAMIENTO DEL SEMEN
(1) Por cada ml de semen se mezclará
cuidadosamente 100ug de tilosina, 500ug de gentamicina y 300/600ug de linco-espectina
disuelto en 0.02 ml de agua doble destilada y estéril.
NOTA: Todas las concentraciones de antibióticos
expresadas aquí son por unidades activas del antibiótico. Los valores
potenciales pueden variar entre lotes de antibiótico. Por esta razón, las cantidades
de material crudo deberán ser ajustadas para cada lote para poder obtener la
concentración adecuada del antibiótico activo.
(2) La adición de estos antibióticos deberá
ser programada para permitir el contacto del semen con el antibiótico por un período
de 3 a 5 minutos antes de la adición del diluyente.
C. FRACCION
DEL DILUYENTE LIBRE DE GLICEROL
(1) Todas las fracciones sin glicerol de
cualquiera de los cinco diluyentes aprobados por el CSS serán preparados para
contener las siguientes concentraciones de antibióticos antes de ser
adicionados al semen:
Tilosina 100 ug por ml
Gentamicina 500 ug por ml
Linco-espectina 300/600 ug por ml
(2) Un volumen de este diluyente
(hasta 50% del volumen del volumen final) se adiciona al semen antes de su
enfriamiento. Todo semen debe mantenerse en contacto con la fracción de
diluyente libre de glicerol por un mínimo de dos horas antes de la adición de
la fracción de diluyente con glicerol.
D. FRACCION
DEL DILUYENTE CON GLICEROL
(1) Esta fracción del diluyente puede tener
entre 5-10% de la concentración de antibiótico de la Fracción de diluyente
libre de glicerol.
(2) La fracción del diluyente con glicerol
se debe añadir a la fracción sin glicerol más semen en una proporción de 1 a
10.
E. CONCENTRACION
FINAL DE ANTIBIOTICOS
Siguiendo las
instrucciones anteriores se obtendrá una concentración final en cada ml de
semen congelado de 50ug de tilosina, 250ug de gentamicina y 150/300ug de linco-espectina.
F. PROCEDIMENTOS
REQUERIDOS DE PROCESAMIENTO
Se ha demostrado que el
procedimiento de procesamiento, la composición del diluyente y las
combinaciones de antibióticos pueden afectar la eficacia del control microbiológico
o la fertilidad. Por esto, una desviación de los pasos siguientes puede
requerir que la organización conduzca algunas pruebas adicionales de eficacia:
(1) Uso de
algún diluyente no aprobada por el CSS.
(2) Contacto
menor de 3 minutos entre el antibiótico y el semen.
(3) Enfriamiento del semen y de la fracción
libre de glicerol por un tiempo menor de 2 horas a 5o C.
(4) El
glicerol viene a ser parte del diluyente luego del enfriamiento a 5o
C.
G. DESVIACION
DE LOS PROCEDIMIENTOS REQUERIDOS DE PROCESAMIENTO
Si se hace algún
cambio en el procedimiento como los expuestos en el numeral anterior se deberá:
(1) Enviar
una solicitud de excepción dirigida al Director del CSS.
(2) El Director del CSS determinará si el
cambio requiere una nueva prueba de eficacia. Estas pruebas se pueden realizar
en un Laboratorio aprobado por el CSS el cual haya demostrado competencia para
llevar a cabo estos análisis.
(3) Los resultados obtenidos de estas
pruebas se deberán enviar al Director del CSS o a la empresa que los solicitó.
(4) Si los resultados demuestran una
eficiencia mayor o igual a la obtenida por Shin (1) se le dará permiso de
utilizar el cambio en el procedimiento.
(5) Todos los gastos para estas pruebas
serán sufragados por la organización que hace la solicitud.
H. DILUYENTES PROBADOS Y APROBADOS
Los siguientes cinco
diluyentes han sido probados para medir su eficiencia en el control de
organismos microbiológicos. El uso de la combinación de antibióticos en los
diluyentes 1 y 3 no tuvo un efecto negativo sobre la motilidad y la fertilidad
del semen luego de la descongelación (los diluentes 2, 4 y 5 no fueron evaluados).
Otros diluyentes podrán ser aprobados por el Director del CSS siguiendo los
pasos en la sección G. En la preparación del diluyente se deberá incluir
antibióticos disueltos en agua doble-destilada estéril para obtener los volúmenes
finales mostrados en el Anexo 1, sección E. La composición final de cada
diluyente es el siguiente:
(1) Citrato de yema de huevo
20% de yema de huevo
2.12gm % citrato de
sodio deshidratado
0.183gm % acido cítrico
monohidrato
7.0% glicerol
(2) 20% yema de huevo-tris
20% yema de huevo
2.42gm % tris
(hidroximetil aminometano)
1.38gm % ácido cítrico
monohidrato
1.00gm % fructosa
7.0% glicerol
(3) Leche entera calentada
7.0% Glicerol
(4) X-Plus
X-plus, como
viene
7.0% glicerol
(5) 28% yema de huevo-tris
28% yema de huevo
1.92gm % tris
(hidroximetil aminometano)
1.10 gm % acido citrico
monohidrato
1.00 gm% glucosa
7.0% glicerol
REFERENCIAS
(1) Shin, S.J.; D.H. Lein; V.H. Patten and
H.L. Ruhnke. 1988. A New Antibiotic Combination for Frozen Bovine Semen.
1. Control of Mycoplasmas, Ureoplasmas, Campilobacter
foetus subsp. venerealis and Haemophilus somnus. Theriogenology 29:577.
ANEXO 2
PROTOCOLO BASICO DE PRUEBAS
DEL CSS
El Programa Básico de Pruebas Sanitarias se describe en
la guía de “Requerimientos Mínimos para el Control de Enfermedades en Semen
Producido para Inseminación Artificial”. Estos requerimientos han sido
desarrollados por mucho tiempo por la industria de la inseminación artificial
para ayudar a asegurar que el semen utilizado para la inseminación artificial
no es un vehículo de transmisión para los agentes de enfermedades
infecto-contagiosas.
A continuación se hace un resumen del Programa de Pruebas
del CSS:
Ambiente de Pruebas
|
PRUEBA |
PRE-ENTRADA
(30 días antes de entrar a aislamiento) |
AISLAMIENTO
(antes de entrar al hato residente) |
HATO
RESIDENTE (donde se colecta semen) |
|
Examen físico |
Realizado por un Médico Veterinario Acreditado. |
|
|
|
Tuberculosis |
Prueba de tuberculina intradermocaudal - negativa. |
Prueba de tuberculina intradermocaudal - negativa (60 días
después de la prueba de pre-entrada). |
Prueba de tuberculina intradermocaudal - negativa (a
intervalos de 6 meses). |
|
Brucellosis |
Examen oficial del estado en el que reside el toro. |
Fijación del Complemento o BAPA o tarjeta por lo menos
30 días después del examen de pre-entrada. |
Pruebas de aglutinación de sangre o Bapa o tarjeta y fijación
de complemento negativas a intervalos de 6 meses. |
|
Diarrea Viral Bovina |
Aislamiento viral sangre o suero negativo o captura de
antígeno ELISA |
Un aislamiento viral negativo ya sea en sangre
(animales menores de 6 meses). en suero.. Una prueba a los toros y animales señuelos
antes de entrar al hato residente. Aislamiento viral negativo en semen procesado antes de
la liberación del semen para uso en diseminación. Aislamiento viral negativo en semen procesado para
cualquier donante que haya resultado positivo para DVB SN. |
|
|
Leptospirosis |
Pruebas de sangre para los cinco serotipos de importancia
en EEUU* |
Pruebas de sangre para los cinco serotipos de
importancia en EEUU* 30 días después de las pruebas de pre-entrada. |
Pruebas de sangre de los cinco serotipos de importancia
en EEUU* en intervalos de 6 meses. |
|
Campilobacteriosis |
|
Serie de cultivos de material prepucial negativos o
monitoreo por anticuerpos fluorescentes donde a cualquier positivo se le haga
un cultivo. Toros menores de 6
meses-negativos en 1 prueba** . Toros menores de 12 meses-negativos en
3 pruebas semanales. Toros mayores de 12 meses negativos en 6 pruebas
semanales. |
Cultivos de material prepucial negativos o monitoreo
por anticuerpo fluorescente cada 6 meses. |
|
Trichomoniasis |
|
Serie de cultivos de microscopia negativa de cultivos
de material prepucial . Toros
menores de 6 meses-negativos en 1 prueba**. Toros menores de 12 meses
- negativos en 3 pruebas. Toros mayores de 12 meses negativos en 6 pruebas
semanales. |
Una microscopia negativa de cultivo de material
prepucial cada 6 meses. |
* L pomona, L hardjo, L canicola, L icterohaemorrhagiae,
y l. grippotyphosa.
** Siempre y cuando el Veterinario Acreditado pueda
certificar que el ternero no ha cohabitado con hembras después de cumplir un
mes de edad.
Tratamiento de antibiótico de todo el semen y el diluyente
(1) Tratamiento del semen: 100ug de tilosina,
500ug de gentamicina y 300/600ug de linco-espectina disuelto en 0.02ml de agua
doble-destilada estéril, adicionado y mezclado con cada ml de semen.
(2) Diluyente aprobado por el CSS: Los
mismos antibióticos se adicionan al diluyente para que la concentración final
sea 50ug de tilosina, 250ug de gentamicina y 150/300ug de linco-espectina en
cada mi de semen congelado.